Задать вопрос юристу
 <<
>>

ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ

Вирусы ПБО образуют особую группу в роду пестивирусов. Три штамма ПБО, выделенные от овец в Великобритании и Австралии, отличались от вируса днареи КРС по аминокислотной последовательности 2-х белков Е1 - Е2 (11).

Морфология и химический состав. Вирус ПБО подобен ВКЧС и ВД-БС. Это оболо- чечный вирус, содержащий 1-цепочечную плюс-РНК, 25-120 нм в диаметре. Плавучая плотность в СбС1 1,09-1,16 г/см3 н зависит от типа клеточной системы культивирования (20).

Антигенная активность, вариабельность и родство. После инокуляции инфекционного материала здоровым овцам у них выявляются АТ к вирусу диареи КРС. У овец, искусственно инфицированных вирусом ПБО на ранней стадии суягностн, развивался иммунитет продолжительностью не менее года. Открытие в 1961 г. АГ взаимосвязи между пестивиру- сами стимулировало дальнейшее изучение естественной и экспериментальной инфекции ВД-БС и ПБО у овец и свиней. Иммунологическое родство вирусов ПБО и ВД-БС установили Гамильтон и др. в 1972 г. (18). Некоторые исследователи считают, что термин вирус ВД- БС и вирус ПБО используются, чтобы обозначить источник выделения вируса - КРС или овцы; очевидно, что имеет место перекрестная инфекция вирусами ПБО н ВД-БС (5, 6, 7, 8, 9, 10, 32, 33). Известны шт. вируса ПБО - Моредун, Обан и Aveyron. При сравнении 3-х шт. вируса ПБ с 4-я штаммами вируса диареи КРС (3-х цитопатогенных и 1-го нецитопатогенного) методом олигонуклеотидного фингерпринта вирусной РНК, оказалось, что штаммы ПБО более близки с нецитопатогенными шт. вируса диареи КРС, чем между собой (4, 15). О естественном заболевании свиней, обусловленном вирусом ПБО, впервые сообщили в Австралии в 1964 г., но вирус ПБО выделили от свиней только в 1973 г. (17). Наличие АТ к вирусам ВД-БС и ПБО в сыворотках свиней усложняет выполнение программ борьбы с КЧС. Показаны тератогенные свойства вирусов (34,35,36,37,38,39, 40, 41, 42,43).

Культивирование. Вирус, содержащийся в инфицированных тканях овец, удавалось пассировать на козах с сохранением патогенности для овец. В лабораторных условиях он культивируется в первичных и перевиваемых культурах клеток тканей жвачных животных.

Экспериментальная инфекция. Пограничная болезнь легко воспроизводится введением суягным овцам неочищенной суспензии тканей головного и спинного мозга и селезенки от больных ягнят. Удавалось экспериментально заражать овец per os и через конъюнктиву; видимо, заражение возможно даже через неповрежденные слизистые оболочки. У экспериментально инфицированных овец 70-80% лимфоцитов содержат вирус. При экспериментальной инфекции суягных маток выживаемость потомства от шт. Моредун - 59%, а от шт. Обан - 88%. Две наиболее общие причины гибели заключались в развитии хронического атрофического синдрома и синдрома, напоминающего ВД-БС.

При экспериментальном заражении результаты зависят от использованного штамма вируса ПБ илн ВД-БС. Так, заражение штаммом NADL (National Animal Disease Laboratory) вируса ВД-БС на 28-54-й день беременности не приводило к трансплацентарной инфекции плодов (30,30а). Инокуляция 9-18-кг поросят шт. Singer вируса ВД-БС не вызывала заболевания, хотя вирус выделялся из крови и тканей инокулированных свиней (14). АТ выявлялись в пробах сыворотки крови через 3 мес.

При заражении таких свиней вирулентным вирусом КЧС развивалось тяжелое заболевание у 7 из 8 животных. Заражение этим штаммом 41-65-дн плодов сопровождалось их гибелью или значительным отставанием в росте (26).

Полевой вирус ПБО при введении свиноматкам на 30-74 день беременности инфицировал плоды и вызывал заболевание, характеризующееся снижением массы плодов и рождением “укороченных” поросят (44). Возрастала смертность, наблюдалась лихорадка, отечность век и анемия в течение 2-ой нед жизни поросят (23, 24). В связи с развитием диареи и респираторных поражений замедлялся рост поросят, часть из которых погибала в течение 2 мес. Вирус изолировался из крови и органов всех павших поросят, но не выделялся от выживших животных. У 40-дн SPF-поросят, содержавшихся в контакте с трансплацентарно инфицированными поросятами, заболевание отсутствовало, но выявлялся высокий титр АТ к вирусу ПБО, который защищал их от заражения вирулентным шт. вируса КЧС (24).

Локализация вируса. АГ вируса ПБО обнаружен при персистентной инфекции в 12,86 % лимфоцитов периферической крови, из них на долю Т-лимфоцитов приходи лось 67,82 %, а В-лимфоцитов - 5,39 %.

ГА свойства. Изолят вируса ПБО, описанный И. А. Третьяковой (2), не обладает ГА- и гемадсорбирующими свойствами.

ЭПИЗООТОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ

В странах, свободных от КЧС (Австралия, Ирландия, Великобритания, Дания), превалируют АТ к вирусу ВД-БС; процент позитивных проб крови свиней составляет 1,6-43,5 в зависимости от возраста животных и вероятности контакта с КРС (21). В странах, где КЧС имеет место, ситуация примерно такая же, но при отсутствии контакта свиней с КРС, АТ к вирусам ВД-БС или ПБ у свиней не выявлялись. Вероятно, длительное присутствие латентно инфицированных животных способствует распространению ПБО или ВД-БС в стаде, вирус может передаваться другим видам чувствительных беременных животных (34-39), Источники и пути передачи инфекции. При совместном содержании с больными животными овцы, как и другие виды, могут инфицироваться алиментарным путем (с кормом или водой) или аэрогенным путем (при вдыхании инфицированной аэрозоли).

Спектр патогенности. В последнее время в Центральной ветеринарной лаборатории в Вэйбридже и в Уорчестекском ветеринарном исследовательском центре установлено, что возбудитель ПБО обладает незначительной патогенностью для свиней, высокопатогенен для плодов КРС и является потенциально серьезной причиной нарушения воспроизводства.

ДИАГНОСТИКА

Диагностика, в том числе и дифференциальная, может быть проведена при исследовании ультракриосрезов тканей методами ИФ и ИФА .

Гибридизация in situ оказалась чрезвычайно чувствительным тестом для диагностики ПБ. Пробы на РНК - эффективный тест для выявления вирусных нуклеотидных последовательностей в мозге экспериментально зараженных животных (лошадей и овец) вирусом ПБО, в том числе и от животных, срезы мозга которых хранились более 30 лет.

Вирус выделяют из эндокринной, мышечной, нервной, а также ретикулоэндотелиальной ткани. Диагностика основана на выявлении персистентной инфекции и специфических АТ. Дифференциальная идентификация изолятов пестивирусов от овец, свиней и КРС может быть проведена только с помощью монАТ. Для этого необходимо использовать: монАТ, выявляющие все пестивирусы, включая ВКЧС; монАТ, выявляющие только ВКЧС и монАТ, выявляющие только пестивирусы жвачных (ВД-БС и ПБО) (12, 16, 19, 28, 40-43). С использованием реакции перекрестной нейтрализации и теста с использованием монАТ установили, что в прошлом вирус ВД-БС мог быть изолирован от свиней, но обозначался как ВКЧС на основе только реакций с полиАТ (38,39).

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ 1.

СюринВ.Н. и др. Част. вет. вирусол., М., Колос,1979. 2.Третьякова И.А. Бюлл. ВИЭВ, 1989, 69 :16. 3.

Acland Н.М. et.al. Aust Vet J, 1972. 4.Akkina R.K. et.al. Virus Res, 1990, 16 :95. 5.Barlow RM. et.al. J Comp Pathol , 1980, 9, 1:67. 6.Barlow RM. et.al. J Comp Pathol, 1983, 93, 3 :451. 7.Barlow RM. Immunol Nervous Syst Infect, 1983, 255. 8.BarlowR.M. et.al. Vet Rec 1979, 104, 15 :334. 9.BarlowR.M. J Comp Pathol, 1980, 90, 1 :87. lO.Barlow RM. et.al. Fortscher Veterinarmad, 1980, 36 :99. ll.BecherP. et.al. Virol, 1994, 198, 2 :542. 12.Bolin S et.al. Arch Virol, 1988, 99 :117. 13.Chappuic G. et.al. Epid Sante Anim, 1984, 6 :117. 14.Coria M.E. et.al. Can J Comp Med Vet Sci, 1978, 42 :239. 15.Dutia B.M. et.al. J Gen Virol, 1990, 71 :1227. 16.Edwards S. et.al. Arch Virol, 1988, 102, (3,4) :197. 17.Femelius A.L. et.al. Can J Comp Med, 1973, 37 :13. 18.Hamilton A. et.al. Vet Res, 1972, 91 :468. 19.Hess RG. et.al. Vet Microbiol,1988,16 :315. 20.Horzinek M.C. et.al. Ann Rech Vet, 1987, 18 :115. 21.Holm J.M. Acta Vet Scand, 1985, 26 :72. 22.Hughes L.E. et.al. Vet Res, 1959, 71 :313. 23.Leforban Y. et.al. Proc ll4 Cong, Pig Vet Soc, Rio de Janeiro, 1990 :228. 24.Leforban Y. et.al. Ann Rech Vet, 1990, 21 :119. 25.Manktelow B.

W. etal. New Zealand Vet J, 1969, 17:245. 26.Mengeling W.L. Proc 10th Int Cong Pig Vet Soc, Rio de Janeiro, 1988 :228. 27.0sbomB.I. etal. IAMA, 1972,160 :442. 28.Peters V. et.al. Vet Microbiol, 1986, 12 : 195. 29.Shelton M. J Anim Sci, 1964, 23 :360. 30.Stewart W.C. etal. J Am Vet Med Ass, 1971, 159 : 1556. 30a. Stewart W.C. et.al. Am J Vet Res, 1980, 41 :459. 31.Sweasey D. et.al. Vet Rec, 1992, 104, 20 :447. 32.Terlecki S. et.al. Br Vet J, 1980, 136 :602. 33.Terlecki S. etal. J Comp Pathol, 1983, 93, 2 :243. 34.

Terpstra C. etal. Vet Sci Communications, 1977, 1,1 :75. 35.Terpstra C. Sidschr dergeneski, 1980, 105, 16 :650. 36.Terpstra C. Inf and bnmun Farm Animal, 1985 :175. 37.Terpstra C. et.al. Res Vet Sci, 1988, 45 : 137. 38.Vannier P. et.al. Ann Rech Vet, 1988, 19 :283. 39,Vannier P. et.al. In Book. Dis of Swine, New York, 1994 :242. 40.Wensvoort G. et.al. Res Vet Sci, 1988, 45 :143. 41.Wensvoort G. et.al. Vet Microbiol, 1988,17 :129. 42.Wensvoort G. etal. Vet Microbiol, 1989, 20 :291. 43.Wensvoort G. et.al. Vet Microbiol, 1989,

21: 9. 44.Wrathall A.E. et.al. Zentralbl Veterinarmed, B, 1978, 25 :62.

<< | >>
Источник: Сюрин В.Н., Самуйленко А.Я., Соловьёв Б.В., Фомина Н.В.. Вирусные болезни животных. - Москва, ВНИТИБП, 928 с, ил.. 2001 {original}

Еще по теме ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ:

  1. ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ
  2. ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ
  3. ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ
  4. ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ.
  5. ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ
  6. ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ
  7. ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ
  8. ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ
  9. ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ
  10. ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ
  11. ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ
  12. ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ
  13. ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ
  14. ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ
  15. ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ.